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Visualisation en 3D des mutations de la Spike du variant Omicron, vue de dessus.
Les mutations sont indiquées en rouge. Les mutations sont présentes sur toute la protéine Spike, mais s’accumulent au niveau de la zone de liaison au récepteur (Receptor Binding Domain ou RBD, coloré en jaune) et dans une région appelée N-terminal Domain (NTD).
Institut Pasteur/Olivier Schwartz et Félix Rey 64306
Visualisation en 3D des mutations de la Spike du variant Omicron -
Les cellules tueuses naturelles (NK) sont des lymphocytes considérés comme faisant partie du système immunitaire inné. Ils possèdent la capacité remarquable de réagir à leur environnement et de générer une sortie coordonnée sans aucune expérience préalable permettant la détection des cellules infectées et d'utiliser leurs superpouvoirs tueurs naturels pour les éliminer. Jusqu'à présent, la façon dont les cellules NK acquièrent cela à travers les étapes de maturation n'est pas connue.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64305
Comment le système immunitaire apprend aux cellules NK à voir les cellules infectées -
Image de microscopie confocale d’une coupe de ganglion lymphatique de singe vert infecté par le SIV, montrant la localisation des cellules NK (mauve), des cellules T (rouge), et des cellules B (vert).
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64292
Ganglion lymphatique de singe vert infecté par le SIV -
Reconstruction en 3 dimensions de cellules CD4 infectées par le SIV, le virus apparait en rouge, le noyau des cellules en gris et le récepteur CD4 en vert.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64291
Reconstruction en 3D de cellules CD4 infectées par le SIV -
Reconstruction en 3 dimensions de cellules CD4 infectées par le SIV, le virus apparait en rouge, le noyau des cellules en blanc et le récepteur CD4 en vert.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64290
Reconstruction en 3D de cellules CD4 infectées par le SIV -
Image de microscopie confocale d’une coupe d’intestin de macaque infecté par le SIV, montrant l’expression de la protéine inflammatoire HSP60 (points verts) et des cellules « NK » (rouge) circulant entre des villosités intestinales. Les noyaux des cellules sont marqués en bleu.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64289
Intestin de macaque infecté par le SIV -
Image de microscopie confocale d’une coupe d’intestin de singe vert infecté par le SIV, montrant l’expression de la protéine inflammatoire HSP60 (points verts) et la circulation de cellules « NK » (rouge) entre des villosités intestinales. Les noyaux des cellules sont marqués en bleu.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64288
Coupe d’intestin de singe vert infecté par le SIV -
Image de microscopie confocale d’une coupe d’intestin de macaque infecté par le SIV, montrant des cellules « NK » (rouge) circulant entre des villosités intestinales (vert). Les noyaux des cellules sont marqués en bleu.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64287
Coupe d’intestin de macaque infecté par le SIV -
Image de microscopie confocale d’une coupe d’intestin de macaque infecté par le SIV, montrant l’expression de la protéine HLA-E (rouge) et de la protéine HSP60 (vert). Les noyaux des cellules sont marqués en bleu.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64286
Coupe d’intestin de macaque infecté par le SIV -
Image de microscopie confocale d’une coupe d’intestin de singe vert infecté par le SIV, montrant des cellules « NK » (mauve) circulant entre des villosités intestinales (vert). Les noyaux des cellules sont marqués en rouge.
Institut Pasteur/Nicolas Huot 64285
Coupe d’intestin de singe vert infecté par le SIV montrant des cellules « NK » -
Accumulation de particules de VIH (en jaune) à la surface d’une cellule infectée (en violet) entrainée par l’action d’anticorps à large spectre (bNAbs).
Image obtenue par microscopie électronique à balayage puis colorisée.
Institut Pasteur/Stéphane Fremont, Jérémy Dufloo, Arnaud Echard, Timothée Bruel, Olivier Schwartz, Jean-Marc Panaud 64273
Accumulation de particules de VIH à la surface d’une cellule infectée -
"Le Dr Roux et le Dr Granjux visitant en 1908 le foyer de Bléré, dirigé par la Dr. R. Lemesle."
Extrait de "Oeuvre Grancher : cinquantenaire, 1903-1953" - Dr. Jules Renault, Dr. P. Armand-Delille, Dr. Courcoux."
Paris : Préservation de l'enfance contre la tuberculose, 1953
Institut Pasteur/Bibliothèque 64223
Oeuvre Grancher : cinquantenaire -
"J. Grancher (1843-1907) Fondateur de l'Oeuvre de Préservation de l'Enfance contre la tuberculose".
Extrait de "Oeuvre Grancher : cinquantenaire, 1903-1953" - Dr. Jules Renault, Dr. P. Armand-Delille, Dr. Courcoux."
Paris : Préservation de l'enfance contre la tuberculose, 1953
Institut Pasteur/Bibliothèque 64222
Oeuvre Grancher : cinquantenaire -
"Oeuvre Grancher : cinquantenaire, 1903-1953" - Dr. Jules Renault, Dr. P. Armand-Delille, Dr. Courcoux."
Paris : Préservation de l'enfance contre la tuberculose, 1953
Institut Pasteur/Bibliothèque 64221
Oeuvre Grancher : cinquantenaire -
Portraits du Dr Roux, de Madame J . Grancher, du Professeur Marfan et du professeur Calmette.
Extrait de "Oeuvre Grancher : cinquantenaire, 1903-1953" -
Paris : Préservation de l'enfance contre la tuberculose, 1953
Institut Pasteur/Bibliothèque 64220
Oeuvre Grancher : cinquantenaire -
Institut Pasteur - Cours de Microbiologie Paris 1924.
Au premier rang :
M. Kolscovsky (Roumanie) ; M. Mauran (Marine) ; M.E.P.S Bore (Troupes Col.) ; M. Baixe (Marine) ; M.B. Alkabès (Turquie) ; M. Hourvitz (Syrie) ; M. Pérard (IP) ; M. Legroux (IP) ; M. Mesnil (IP) ; M. Calmette (IP) ; M. Dumas (IP) ; M. A. Figuerola (Méd. Mil. du Pérou) ; M. Esquier (Troupes Métrop.) ; M. Treillard (IP) ; M. Vinzent (IP) ; M. Canoz (IP) ; M. Vilter (Russie) ; Mlle Valentin (Paris)
Institut Pasteur/Musée Pasteur MP30287
Cours de Microbiologie 1924 -
Expression de différents marqueurs développementaux indiquant une polarité antéro-postérieur dans des modèles multicellulaires in vitro de gastrulation de l'embryon, appelés gastruloïdes, et ici formés à partir de cellules souches embryonnaires de souris.
En vert: un marqueur du neuroectoderme marquant le pôle postérieur
En rouge: trois différents marqueurs soit de l'endoderme, soit du mésoderme
En bleu: les noyaux des cellules
Le but de cette expérience est de quantifier la reproductibilité et la précision de l'établissement de cette polarité antéro-postérieur en comparant les profils d'expression de ces gènes clés dans un grand nombre de gastruloïdes.
Les images sont des projections d'images 3D obtenues par imagerie confocale de gastruloïdes marqués par immunofluorescence.
Institut Pasteur/Mélody Merle 64216
Gastruloïdes, modèle multicellulaire in vitro de la gastrulation de l'embryon -
Enveloppe nucléaire (bleu), cytosquelette d'actine (orange), marqueur du neuroectoderme (vert) et du mésoderme (rouge) dans un gastruloïde, un modèle multicellulaire in vitro de la gastrulation de l'embryon, obtenu à partir de cellules souches embryonnaires de souris. Cette expérience avait pour but la caractérisation des patterns d’expression génétique dans les gastruloïdes. L'image est une coupe 2D obtenue au microscope confocal d'un gastruloïde fixé et marqué par immunofluorescence.
Institut Pasteur/Léah Friedman 64215
Gastruloïde, modèle multicellulaire in vitro de la gastrulation de l'embryon. -
Montage d'images de gastruloïdes (modèle multicellulaire in vitro de la gastrulation de l'embryon, ici des cellules souches embryonnaires de souris), où l'on peut voir un marqueur de différenciation en mésoderme (magenta), et les noyaux des cellules (cyan).
Cette expérience avait pour but la caractérisation des gastruloïdes en terme de répartition des marqueurs de différenciation, et leur reproductibilité en terme de forme et de taille.
L'image est une projection 3D d'images obtenues au microscope confocal, de gastruloïdes fixés et marqués par immunofluorescence.
Institut Pasteur/Judith Pineau, Isma Bennabi et Thomas Gregor 64214
Montage d'images de gastruloïdes -
Montage d'images de gastruloïdes (modèle multicellulaire in vitro de la gastrulation de l'embryon, ici des cellules souches embryonnaires de souris), où l'on peut voir un marqueur de différenciation en mésoderme (magenta), et les noyaux des cellules (cyan).
Cette expérience avait pour but la caractérisation des gastruloïdes en terme de répartition des marqueurs de différenciation, et leur reproductibilité en terme de forme et de taille.
L'image est une projection 3D d'images obtenues au microscope confocal, de gastruloïdes fixés et marqués par immunofluorescence.
Institut Pasteur/Judith Pineau, Isma Bennabi et Thomas Gregor 64213
Montage d'images de gastruloïdes