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Conidies du champignon filamenteux Aspergillus fumigatus en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Stéphanie Guadagnini, Plate-forme de microscopie ultrastructurale - Anne Beauvais, unité Aspergillus. Couleurs Jean-Marc Panaud. 57873
Conidies de Aspergillus fumigatus -
Morphologie de Listeria monocytogenes en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Pierre Gounon 57793
Listeria monocytogenes -
Morphologie de Streptococcus pneumoniae en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Pierre Gounon 57792
Streptococcus pneumoniae -
Coupe de bacille lactique en microscopie électronique à transmission.
Institut Pasteur/A.Ryter et F. Gasser 56697
Coupe de bacille lactique -
Biofilm de bactéries Escherichia coli se développant sur une surface de verre.
Microscopie électronique à balayage colorisée.
Institut Pasteur/J.M. Ghigo et B. Arbeille (LBC-ME. Faculté de Médecine de Tours) 56292
Biofilm de bactéries Escherichia coli se développant sur une surface de verre -
Observation avec ANNAPALM de cellules U-373 MG (glioblastomes humains) dont les microtubules ont été marqués par fluorescence.
ANNAPALM est une méthode informatique pour augmenter la résolution spatio-temporelle de la microscopie optique qui peut être utilisé pour imager des milliers de cellules à des échelles allant de 20 nm à 2 mm.
Institut Pasteur/Imagerie et Modélisation 56276
Image produite avec ANNAPALM -
Cellules musculaires de souris vues en microscopie électronique.
© Institut Pasteur/Christian Huet 56158
Cellules musculaires de souris vues en microscopie électronique. -
Virus de la rage en microscopie électronique.
Institut Pasteur/Monique Lafon et Charles Dauguet 56156
Virus de la rage en microscopie électronique -
Virus de la rage au contact d'une cellule.
Microscopie électronique à transmission.
Institut Pasteur/Charles Dauguet 56154
Virus de la rage au contact d'une cellule. -
Bactériophages SPP1 observés en cryomicroscopie (microscope JEOL 2010F).
Institut Pasteur/Gérard Pehau-Arnaudet - Plate-Forme de Microscopie Electronique 56149
Bactériophages SPP1 observés en cryomicroscopie -
Bactériophage T4 vu en microscopie électronique (coloration négative).
Le Bactériophage T4 est spécifique de la bactérie Escherichia coli.
Institut Pasteur/Eric Larquet - Plate-Forme de Microscopie Electronique 56148
Bactériophage T4 -
Bactériophages d'Escherichia coli en microscopie électronique.
© Institut Pasteur/Antoinette Ryter 54060
Bactériophages d'Escherichia coli en microscopie électronique. -
Touffes ciliaires de cellules sensorielles vestibulaires analysées au microscope électronique à balayage. On peut distinguer, une touffe ciliaire normale avec sa forme caractéristique agencée en « forme d’escalier » (couleur jaune), une touffe ciliaire défectueuse Usher1g (en rose), et une touffe ciliaire Usher1g traitée (en vert) dont la forme normale/caractéristique à été restaurée par la thérapie génique.
Institut Pasteur/Génétique et physiologie de l'audition 53846
Touffes ciliaires de cellules sensorielles vestibulaires -
La bactérie Bacillus anthracis, responsable de la maladie dite du « charbon », a été découverte par Davaine et caractérisée par Pasteur. Les structures observées sur une coupe ultra-fine (50 millionièmes de mm) de bacilles en sporulation montrent des spores (formes de résistance), en voie de maturation.
Image colorisée de microscopie électronique à trasmission.
Institut Pasteur 53840
Bacilles du « charbon » -
Cellules de staphylocoque doré, Staphylococcus aureus, se divisant et restant associées en amas caractéristiques (grappes de raisin). Microscopie électronique à balayage (MEB). Grossissement X8500.
Institut Pasteur/Stéphanie Guadagnini - Plate-forme de microscopie ultrastructurale et Olivier Chesneau, Unité des membranes bactériennes 53719
Staphylococcus aureus, staphylocoque doré -
Bacillus anthracis capsulé. Mise en évidence sur coupe, en microscopie électronique. La capsule est composée d'acide poly-gamma-D-glutamique et a un aspect chevelu. Bacillus anthracis est l'agent de la maladie du charbon qui affecte les animaux à sabots (mouton, chèvre, vache...) et éventuellement l'homme, mais n'est pas contagieuse (Grossissement X 35000).
Institut Pasteur/Pierre Gounon 53718
Bacillus anthracis capsulé -
Neurones primaires de rat en culture (rouge: MAP2; Bleu: DAPI, microscopie à fluorescence).
Institut Pasteur/Oriane Mercati 53628
Neurones primaires de rat en culture -
Grains de pollen de cyprès (Hesperocyparis arizonica) observés en microscopie électronique à balayage (grossissement x 2200). Les orbicules ou "corps de Ubisch" (petites granules de 300-600nm), caractéristiques des pollens de Cupressaceae sont visibles à la surface de l'exine (membrane externe).
© Youcef Shahali / Colorisation Jean-Marc Panaud, Institut Pasteur. 53479
Grains de pollen de cyprès (Hesperocyparis arizonica) observés en microscopie électronique à balayage -
Le bacille de la tuberculose (en vert) entre dans les cellules dendritiques (en rouge). La microscopie confocale, ici utilisée, a eu un impact important pour certaines découvertes récentes concernant cette maladie.
Institut Pasteur/Ludovic Tailleux 53383
Le bacille de la tuberculose (en vert) entre dans les cellules dendritiques (en rouge) -
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage.
Des chercheurs de l’Institut Pasteur, en collaboration avec l’Institut Gustave-Roussy, ont identifié deux espèces bactériennes de notre organisme, Enterococcus hirae et Barnesiella intestinihominis, qui potentialisent l’effet d’un traitement courant de chimiothérapie : le cyclophosphamide.
Enterococcus hirae renforce la réponse immunitaire naturelle de l’organisme contre la tumeur. Cet effet bénéfique de l’entérocoque est transitoire mais Barnesiella maintient cette réponse sur le long terme.
Institut Pasteur/Chantal Ecobichon avec l'Ultrapole 53328
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage