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  • Microscopie à fluorescence de mycélium d’Aspergillus fumigatus
    Photographie en microscopie à fluorescence de mycélium d’Aspergillus
    fumigatus. Différentes molécules de surface pouvant interagir avec les
    cellules humaines sont identifiés par des marqueurs fluorescents.
    Institut Pasteur/Immunobiology of Aspergillus - photo Vishukumar Aimanianda et Sarah Dellière 65168
    Microscopie à fluorescence de mycélium d’Aspergillus fumigatus

     

  • Nouveaux neurones produits dans un cerveau adulte de souris
    Nouveaux neurones produits dans un cerveau adulte de souris.
    Institut Pasteur/Pierre-Marie Lledo 62930
    Nouveaux neurones produits dans un cerveau adulte de souris

     

  • Image produite avec ANNAPALM
    Observation avec ANNAPALM de cellules U-373 MG (glioblastomes humains) dont les microtubules ont été marqués par fluorescence.
    ANNAPALM est une méthode informatique pour augmenter la résolution spatio-temporelle de la microscopie optique qui peut être utilisé pour imager des milliers de cellules à des échelles allant de 20 nm à 2 mm.
    Institut Pasteur/Imagerie et Modélisation 56276
    Image produite avec ANNAPALM

     

  • Chromosomes métaphasiques et caryotype d’une cellule lymphoïde cancéreuse.
    Au cours du développement lymphocytaire, le processus de recombinaison V(D)J peut, en cas de défaut de réparation de l’ADN, induire une instabilité génomique et le développement de lymphomes/leucémies.
    Afin d’identifier les translocations spécifiques de tumeurs obtenues dans différents modèles murins, le caryotype des cellules tumorales est établi en marquant les chromosomes par multi FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Une fausse couleur est attribuée à chaque paire de chromosomes marquée avec une combinaison de sondes spécifiques, permettant ainsi leur identification. Cette tumeur présente ici des translocations impliquant les chromosomes 12 (porteur du locus Igh codant pour la chaine lourde des anticorps), 15 (porteur de l’oncogène c-myc) et 6 (porteur du locus Igk codant pour la chaine légère des anticorps).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50935
    Chromosomes métaphasiques et caryotype d’une cellule lymphoïde cancéreuse.

     

  • Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B
    Chromosomes métaphasiques marqués par multi-FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Une fausse couleur est attribuée à chaque paire de chromosomes marquée avec une combinaison de sondes spécifiques, permettant ainsi leur identification.
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Hélène Lenden Hasse (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50173
    Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B

     

  • Chromosomes métaphasiques d’une cellule pre-B avec une translocation impliquant le locus Igk.
    Afin de quantifier l’instabilité génomique due au processus de recombinaison V(D)J dans différentes lignées cellulaires pre-B de souris, les chromosomes métaphasiques sont marqués par FISH (Fluorescent In Situ Hybridization) avec des sondes spécifiques du locus Igk codant pour la chaîne légère des Immunoglobulines (Igk-C en rouge, Igk-V en vert), et un paint du chromosome 6 (en blanc). L’ADN est marqué avec du DAPI (en bleu).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50171
    Chromosomes métaphasiques d’une cellule pre-B avec une translocation impliquant le locus Igk.

     

  • Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B
    Chromosomes métaphasiques marqués par multi-FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Visualisation des chromosomes marqués avec du DAPI et différentes combinaisons de sondes spécifique à chaque paire de chromosomes.
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Hélène Lenden Hasse (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50170
    Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B

     

  • Chromosomes métaphasiques d’une cellule pro-B avec une translocation impliquant le locus Igh
    Afin de quantifier l’instabilité génomique due au processus de recombinaison V(D)J dans les progéniteurs lymphoïdes de différents modèles murins, les chromosomes métaphasiques sont marqués par FISH (Fluorescent In Situ Hybridization) avec des sondes spécifiques du locus Igh codant pour la chaîne lourde des Immunoglobulines (Igh-C en rouge, Igh-V en vert), et un marquage spécifique du chromosome 12 (en bleu). L’ADN est marqué avec du DAPI (en blanc).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2
    (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50165
    Chromosomes métaphasiques d’une cellule pro-B avec une translocation impliquant le locus Igh

     

  • Chromosomes métaphasiques d’une cellule lymphoïde cancéreuse présentant une amplification des gènes Igh et c-myc
    Des modèles de souris présentant une déficience héréditaire de la voie de réparation NHEJ (Non Homologous End Joining) et déficientes pour le gène suppresseur de tumeurs p53 développent des tumeurs pro-B caractéristiques, présentant des translocations et amplifications impliquant le locus Igh (codant pour la chaîne lourde des Immunoglobulines) et l’oncogène c-myc.
    Ces amplicons sont détectés ici par FISH (Fluorescent In Situ Hybridization) en utilisant des sondes spécifiques des loci Igh (en rouge) et c-myc (en vert). L’ADN est marqué avec du DAPI (en bleu).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50162
    Chromosomes métaphasiques d’une cellule lymphoïde cancéreuse présentant une amplification des gènes Igh et c-myc

     

  • Chromosomes métaphasiques d’une cellule lymphoïde cancéreuse
    Au cours du développement lymphocytaire, le processus de recombinaison V(D)J peut, en cas de défaut de réparation de l’ADN, induire une instabilité génomique et le développement de lymphomes/leucémies. Afin d’identifier les translocations spécifiques de tumeurs obtenues dans différents modèles murins, le caryotype des cellules tumorales est établi en marquant les chromosomes par multi FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Une fausse couleur est attribuée à chaque paire de chromosomes marquée avec une
    combinaison de sondes spécifiques, permettant ainsi leur identification.
    Cette tumeur présente ici des translocations impliquant les chromosomes 12 (porteur du locus Igh codant pour la chaine lourde des anticorps), 15 (porteur de l’oncogène c-myc) et 6 (porteur du locus Igk codant pour la chaine légère des anticorps).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50160
    Chromosomes métaphasiques d’une cellule lymphoïde cancéreuse

     

  • Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B
    Chromosomes métaphasiques marqués par multi-FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Visualisation des chromosomes marqués avec du DAPI et différentes combinaisons de sondes spécifique à chaque paire de chromosomes.
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Hélène Lenden Hasse (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50153
    Chromosomes métaphasiques et noyaux interphasiques de cellules pre-B

     

  • ADN interphasique et métaphasique de cellules pre-B.
    Afin de quantifier l’instabilité génomique due au processus de recombinaison V(D)J dans différentes lignées cellulaires pre-B de souris, les chromosomes métaphasiques sont marqués par FISH (Fluorescent In Situ Hybridization) avec des sondes spécifiques du locus Igk codant pour la chaîne légère des Immunoglobulines (Igk-V en vert), et un paint du chromosome 6 (en rouge). L’ADN est marqué avec du DAPI (en bleu).
    Image prise avec un microscope à fluorescence ZEISS AxioImager Z2 (Objectif X63) et analysée avec le logiciel Isis (Metafer).
    © Institut Pasteur/Chloé Lescale (Laboratoire de Ludovic Deriano) 50152
    ADN interphasique et métaphasique de cellules pre-B.

     

  • Divisions mitotiques synchrones chez un embryon de drosophile
    Divisions mitotiques synchrones chez un embryon de drosophile. (DAPI: bleu; H3PS10: vert).
    © Institut Pasteur/Delphine Fagegaltier, Génétique et Epigénénétique de la Drosophile en collaboration avec la Plate-forme d'Imagerie Dynamique 40031
    Divisions mitotiques synchrones chez un embryon de drosophile

     

  • Infection de cellules humaines par un virus Chikungunya fluorescent (rouge et vert).
    Infection de cellules humaines par un virus Chikungunya fluorescent (rouge et vert).
    Institut Pasteur/Hans Gad, Essia Belarbi et Philippe Desprès 39691
    Infection de cellules humaines par un virus Chikungunya fluorescent (rouge et vert).

     

  • Détection des génomes du virus de la Dengue dans des cellules de foie humain infectées pendant 16 heures
    Détection des génomes du virus de la Dengue dans des cellules de foie humain infectées pendant 16 heures. Les génomes apparaissent en rouge et les noyaux des cellules en bleu. Les échantillons sont analysés avec un microscope à fluorescence.
    Institut Pasteur/Nolwenn Jouvenet 36687
    Détection des génomes du virus de la Dengue dans des cellules de foie humain infectées pendant 16 heures

     

  • Coupe de cerveau de souris observée en microscopie à fluorescence.
    Coupe de cerveau de souris observée en microscopie à fluorescence. Les filaments verts représentent les néo-neurones organisés en réseau.
    Les études sur la néoneurogenèse font beaucoup appel à des observations chez la souris.
    Institut Pasteur/Mariana Alonso et Pierre-Marie Lledo, unité Perception et Mémoire 34097
    Coupe de cerveau de souris observée en microscopie à fluorescence.

     

  • Observation en microscopie à fluorescence d'une cellules infectée par Listeria.
    Observation en microscopie à fluorescence d'une cellules infectée par Listeria. Les bactéries (en rouge) se multiplient dans la cellules infectée et se déplacent en utilisant un constituant de cette cellule nommé actine (en vert). Le noyau de la cellule infectée est ici coloré en bleu.
    Institut Pasteur/Edith Gouin et Pascale Cossart 33493
    Observation en microscopie à fluorescence d'une cellules infectée par Listeria.

     

  • Cellules PtK2 infectées par des bactéries mutantes de <i>Listeria monocytogenes</i>.
    Cellules PtK2 infectées par des bactéries mutantes de Listeria monocytogenes. Listeria monocytogenes possède une motilité dépendante de la polymérisation de l'actine. Chez ce mutant le gène codant pour la protéine ActA qui est nécessaire à la polymérisation de l'actine est absent. Ces mutants s'accumulent dans le cytosol de la cellule, forment des micro-colonies et sont moins virulents.
    © Institut Pasteur/Edith Gouin et Pascale Cossart 33486
    Cellules PtK2 infectées par des bactéries mutantes de Listeria monocytogenes.

     

  • Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.
    Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.
    © Institut Pasteur/Edith Gouin et Pascale Cossart 33485
    Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.

     

  • Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.
    Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.
    © Institut Pasteur/Edith Gouin et Pascale Cossart 33484
    Comètes d'actine formées par Listeria monocytogenes au cours de l'infection de cellules PtK2.