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Neurones humains post-mitotiques (NT2-N) en culture. Cellules différenciées à partir du clone 2D1 de tératocarcinome humain NTera-2 par traitement séquentiels à l'acide rétinoïque et inhibiteur de mitoses. Des variations dans le protocole de différenciation permettent d'obtenir aussi à partir de ce clone, soit des cultures pures de astrocytes (NT2-A) soit des cultures mixtes neurones /astrocytes (NT2-N/A).
Institut Pasteur/Monique Lafon et Christophe Prehaud I05277
Neurones humains post-mitotiques (NT2-N) en culture -
Neurone d'hippocampe de rat en culture infecté par Bornavirus, microscopie apotome.
Marquage vert : protéine N du Bornavirus.
Marquage rouge : marqueur synaptique synapsine 1. Marquage bleu : noyau de la cellule (DAPI).
Institut Pasteur/Romain Volmer I05331
Neurone d'hippocampe de rat en culture infecté par Bornavirus -
Cellule juxtaglomérulaire du bulbe olfactif du rat enregistrée dans la configuration 'cellule entière' et remplie d'un traceur vert flurorescent Alexa Fluor 488 dextran. Dans la configuration 'cellule entière' ou 'whole cell' la pipette enregistre le courant traversant la surface membranaire totale.
© Institut Pasteur I05552
Cellule juxtaglomérulaire du bulbe olfactif du rat -
Les néo-neurones marqués en vert migrent depuis leur site de production (zone sous-ventriculaire) vers le bulbe olfactif. Ceux qui ont incorporé un marqueur de division cellulaire ont leur noyau marqué en rouge.
© Institut Pasteur I05347
Migration des néo-neurones dans le cerveau adulte -
La zone neurogénique la plus importante chez l'adulte se situe au coeur du cerveau : la ZSV (Zone Sous Ventriculaire). C'est là que sont produites les nouvelles cellules, ensuite acheminées puis induites à se différencier en véritables neurones. Sur cette image on peut voir en bleu, les neurones juvéniles, en vert les cellules gliales et en rouge les cellules souches venant de se diviser.
© Institut Pasteur/Mariana Alonso, unité Perception et Mémoire Olfactive I05550
Zone neurogénique dans le cerveau adulte -
Image prise au microscope confocal montrant un glomérule du bulbe olfactif marqué à la GFP (en vert). Cette structure est activée spécifiquement par le Lyral (odeur florale). En rouge, les neurones du circuit bulbaire.
© Institut Pasteur/Mariana Alonso, unité Perception et mémoire Olfactive I05548
Glomérule du bulbe olfactif -
Neurogénèse secondaire du bulbe olfactif :
Dans le cerveau des mammifères adultes, la zone sous-ventriculaire (ZSV) et son extension vers le bulbe olfactif ont la particularité de produire de nouveau neurones.
Cette image prise en microscopie confocale montre la position finale d'un néo-neurone (en vert) après une migration depuis la zone sous-ventriculaire (SVZ) jusqu'au bulbe olfactif.
Pour suivre la migration et la maturation du neuroblaste ou cellule souche neurale, un vecteur viral exprimant la GFP a été injecté dans la SVZ. La présence de neurones matures est révélée par l'anticorps dirigé contre NeuN (en rouge).
© Institut Pasteur/Mariana Alonso, unité Perception et Mémoire Olfactive I05549
Neuroblaste en mouvement -
Neurone du bulbe olfactif de souris en cours d'enregistrement électrophysiologique. La pipette de verre servant pour l'enregistrement électrique est ici remplie d'une solution contenant un marqueur fluorescent qui diffuse progressivement dans le cytoplasme de la cellule. Ceci permet de connaître la morphologie du neurone enregistré. Les enregistrements électrophysiologiques de l'activité bulbaire permettent d'aborder les processus neuronaux impliqués dans le traitement et la transmission de l'information olfactive.
© Institut Pasteur/Antoine Nissant, unité Perception et Mémoire Olfactive I05551
Neurone du bulbe olfactif de souris en cours d'enregistrement électrophysiologique -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03226
Neurones en culture infectés par le virus de la rage -
Culture de cellules normales. Le fluorochrome DAPI colore l'ADN dans le noyau des cellules.
© Institut Pasteur I01181
Culture de cellules -
Cellules isolées à partir de la moelle épinière de rats, transduites (transfert génétique sous l'action d'un bactériophage) avec un vecteur dérivé du VIH-1, puis marquées par un anticorps spécifique des neurones (Neu N en vert).
© Institut Pasteur I04817
Cellules transduites avec un vecteur dérivé du VIH-1 -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03232
Neurones en culture infectés par le virus de la rage -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03230
Neurones en culture infectés par le virus de la rage -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03229
Visualisation par immunofluorescence de neurones infectés par le virus de la rage -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03228
Neurones en culture infectés par le virus de la rage -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03227
Neurones en culture infectés par le virus de la rage -
Neurones infectés par le virus de la rage. Visualisation par immunofluorescence indirecte à l'aide d'anticorps anti-nucléocapside couplés à la fluorescéine.
© Institut Pasteur I03218
Visualisation par immunofluorescence de neurones infectés par le virus de la rage -
Neurone en culture du système nerveux central infecté par une souche de rage fixe. Coloration par immunofluorescence anti-nucléocapside rabique, 24 heures après l'infection.
© Institut Pasteur I01473
Neurone du système nerveux central infecté par une souche de rage fixe -
Cette image prise au microscope confocal montre un nouveau neurone (marqué en vert par la GFP). Ce néo-neurone est intégré dans le circuit bulbaire (les neurones pré-existants sont marqués en rouge).
© Institut Pasteur/Pierre-Marie Lledo et Mariana Alonso, unité Perception et Mémoire Olfactive 12730
Néo-neurone dans le bulbe olfactif -
Neurones d'hippocampe de souris en culture. Ces cellules sont utilisées ici pour la recherche sur les Encéphalopathies Spongiformes Transmissibles (EST), appellées aussi maladies à Prion.
Le marquage bleu (Hoechst) marque de façon non spécifique l'ADN de toutes les cellules, il permet de vérifier que la culture cellulaire est pure.
Le marquage vert est spécifique des neurones : il met en évidence les microtubules à l'aide d'un anticorps dirigé contre la tubuline.
Avec ces cultures de cellules, on essaye de mimer ce qui se passe chez les malades et visualiser le déplacement du prion dans les neurones.
Institut Pasteur/Philippe Casanova 13362
Neurones d'hippocampe de souris en culture utilisées pour la recherche sur les Encéphalopathies Spongiformes Transmissibles (EST)