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Cellules sensorielles auditives de l'oreille interne, vue en microscopie électronique à balayage.
En jaune, les cellules sensorielles auditives, avec leurs touffes ciliaires. Celles-ci convertissent l'onde sonore en signal électrique, apte à être traité par le cerveau.
Institut Pasteur/Unité génétique et physiologie de l'audition 59769
Cellules sensorielles auditives de l'oreille interne, vue en microscopie électronique à balayage. -
Photographie en microscopie électronique de spores d’Aspergillus fumigatus en train de germer. Image colorisée.
Institut Pasteur - photo Vishukumar Aimanianda, Christine Schmitt et Adeline Mallet 65167
Spores d’Aspergillus fumigatus en train de germer. -
Morphologie de Listeria monocytogenes en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Pierre Gounon 57793
Listeria monocytogenes -
Image par microscopie électronique à balayage d’une cellule ciliée (en vert) infectée par le SARS-CoV-2, avec quelques cils restants et des particules virales (colorisées en bleu) dispersées au niveau de la membrane plasmique.
Institut Pasteur. Image par Rémy Robinot, Mathieu Hubert, Vincent Michel, Olivier Schwartz et Lisa Chakrabarti, et colorisée par Jean Marc Panaud 62630
Cellule ciliée infectée par le SARS-CoV-2 -
Biofilm de bactéries Escherichia coli se développant sur une surface de verre.
Microscopie électronique à balayage colorisée.
Institut Pasteur/J.M. Ghigo et B. Arbeille (LBC-ME. Faculté de Médecine de Tours) 56292
Biofilm de bactéries Escherichia coli se développant sur une surface de verre -
Microscopie électronique à balayage montrant les changements de l’épithélium olfactif après infection par le SARS-CoV-2.
A la périphérie de la photo, les cellules ciliées sont normales. Au centre : perte de cils 4 jours après infection. Les particules virales bourgeonnent à la surface des cellules infectées ayant perdu leurs cils.
Institut Pasteur/Unité Perception et Mémoire 62710
Changements de l’épithélium olfactif après infection par le SARS-CoV-2 -
Lymphocyte T4 avec bourgeonnement de nombreuses particules virales de HIV à sa surface. Microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Pierre Gounon 57874
Virus VIH-1 à la surface d'un lymphocyte -
Microscopies électronique à balayage montrant les changements de l’épithélium olfactif après infection par le SARS-CoV-2.
A gauche muqueuse olfactive non infectée
Au centre muqueuse olfactive 4 jours post infection
A droite, les particules virales bourgeonnent à la surface des cellules infectées ayant perdu leurs cils.
Institut Pasteur/Unité Perception et Mémoire 62709
Changements de l’épithélium olfactif après infection par le SARS-CoV-2. -
Morphologie de Streptococcus pneumoniae en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Pierre Gounon 57792
Streptococcus pneumoniae -
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage.
Des chercheurs de l’Institut Pasteur, en collaboration avec l’Institut Gustave-Roussy, ont identifié deux espèces bactériennes de notre organisme, Enterococcus hirae et Barnesiella intestinihominis, qui potentialisent l’effet d’un traitement courant de chimiothérapie : le cyclophosphamide.
Enterococcus hirae renforce la réponse immunitaire naturelle de l’organisme contre la tumeur. Cet effet bénéfique de l’entérocoque est transitoire mais Barnesiella maintient cette réponse sur le long terme.
Institut Pasteur/Chantal Ecobichon avec l'Ultrapole 53328
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage -
Cellules de staphylocoque doré, Staphylococcus aureus, se divisant et restant associées en amas caractéristiques (grappes de raisin). Microscopie électronique à balayage (MEB). Grossissement X8500.
Institut Pasteur/Stéphanie Guadagnini - Plate-forme de microscopie ultrastructurale et Olivier Chesneau, Unité des membranes bactériennes 53719
Staphylococcus aureus, staphylocoque doré -
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage.
Des chercheurs de l’Institut Pasteur, en collaboration avec l’Institut Gustave-Roussy, ont identifié deux espèces bactériennes de notre organisme, Enterococcus hirae et Barnesiella intestinihominis, qui potentialisent l’effet d’un traitement courant de chimiothérapie : le cyclophosphamide.
Enterococcus hirae renforce la réponse immunitaire naturelle de l’organisme contre la tumeur. Cet effet bénéfique de l’entérocoque est transitoire mais Barnesiella maintient cette réponse sur le long terme.
© Institut Pasteur/Chantal Ecobichon avec l'Ultrapole 51105
Bactéries Enterococcus hirae en microscopie électronique à balayage -
Touffes ciliaires de cellules sensorielles vestibulaires analysées au microscope électronique à balayage. On peut distinguer, une touffe ciliaire normale avec sa forme caractéristique agencée en « forme d’escalier » (couleur jaune), une touffe ciliaire défectueuse Usher1g (en rose), et une touffe ciliaire Usher1g traitée (en vert) dont la forme normale/caractéristique à été restaurée par la thérapie génique.
Institut Pasteur/Génétique et physiologie de l'audition 53846
Touffes ciliaires de cellules sensorielles vestibulaires -
Cellules dendritiques vues en microscopie électronique à balayage.
Institut Pasteur/Olivier Schwartz, Plateforme de Microscope électronique. Colorisation Jean Marc Panaud 60952
Cellules dendritiques -
Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa, deux microorganismes du microbiote pulmonaire, observée en microscopie électronique à balayage. La bactérie se fixe le long du mycélium et sur la matrice extracellulaire formée par le champignon. Cette interaction résulte en la formation d'un biofilm mixte composé de matrice extracellulaire englobant le champignon et la bactérie.
Institut Pasteur/Benoît Briard - unité des Aspergillus, Perrine Bomme - Plate-Forme de Microscopie ultrastructurale 59767
Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa, deux microorganismes du microbiote pulmonaire, observée en microscopie électronique à balayage -
Cellule dendritique humaine vue en microscopie électronique à balayage. Les cellules dendritiques sont des cellules spécialisées dans la présentation d'antigènes au système immunitaire.
Institut Pasteur/Olivier Schwartz, Unité Virus et Immunité avec Stéphanie Guadagnini et Marie-Christine Prevost, PFMU Imagopole. 51754
Cellule dendritique humaine -
Ecailles sur le corps d'un moustique Aedes albopictus femelle.
© Institut Pasteur/Christine Schmitt, Plate-Forme Microscopie Ultrastructurale - Anubis Vega Rua, Laboratoire Arbovirus et Insectes Vecteurs 51913
Ecailles sur le corps d'un moustique Aedes albopictus femelle -
Mise en contexte historique et présentation du principe et des apports de la microscopie électronique par les chercheurs Olivier Schwartz et Vincent Michel de l’Institut Pasteur.
En introduction, le Pr Olivier Schwartz rappelle que la microscopie électronique a été inventée dans les années 1930 et que c'est grâce à cette technique que l’observation des virus est devenue possible. Cette technique permet en effet d’avoir accès à des objets invisibles à l’œil nu et invisibles en microscopie optique. Louis Pasteur par exemple quand il a mis au point le vaccin contre la rage n’avait jamais vu le virus. Transition sur des images de l'effet de l'infection par le coronavirus sur la fonction des cellules respiratoires. Vincent Michel présente ensuite le principe de la microscopie électronique dite « à balayage » et Olivier Schwartz donne des exemples d’apports de cette technique dans l'étude des microorganismes. La vidéo se conclue avec des images produites avec cette technique puis colorisées en post production.
Institut Pasteur 65048
Vidéo "La Microscopie électronique" -
Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa observée en microscopie électronique à balayage. La bactérie se fixe le long du mycélium et émet des filaments augmentant son adhésion. Cette étude montre que ces deux microorganismes du microbiote pulmonaire sont capables de former une communauté mixte bactérie-champignon.
Institut Pasteur/Benoît Briard et Anne Beauvais - unité des Aspergillus, Perrine Bomme - Plate-Forme de Microscopie ultrastructurale, colorisation Jean-Marc Panaud 59765
Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa observée en microscopie électronique à balayage. -
Mélange de trypanosomes possédant des flagelles de longueur normale (corps bleu, flagelle rouge) ou de longueur réduite (corps rouge, flagelle bleu). Image de microscopie électronique à balayage.
Le trypanosome est bien connu pour être responsable de la maladie du sommeil en Afrique mais constitue aussi un modèle de travail de premier choix pour étudier les cils et flagelles.
En manipulant la machinerie responsable de la construction des flagelles, les chercheurs ont produit des trypanosomes qui assemblent des flagelles de différente longueur.
Ce modèle de croissance et de verrouillage permettra d’étudier les causes des défauts de longueur des cils et flagelles chez les patients souffrant de ciliopathies.
Institut Pasteur/Thierry Blisnick et Philippe Bastin 61292
Mélange de trypanosomes à flagelles de longueur normale ou réduite