Votre recherche :
48 résultat(s) en 0.05 s
-
Réseau de microtubules dans l’œil pupal de la drosophile.
Microtubules marqués par la protéine jupiter-YFP.
Institut Pasteur/Alexis Villars 61304
Réseau de microtubules dans l’œil pupal de la drosophile -
Mort cellulaire et homéostasie des épithéliums chez la drosophile.
Gauche : Élimination des cellules WT (vert) près des cellules pré-tumorales (activation de Ras, violet). Les flèches oranges montrent le déplacement des tissus analysé par PIV.
Milieu gauche : Évolution de la surface apicale de la cellule (bleu = compactage, rouge = expansion).
Milieu droite : senseur de la voie Dpp dans la pupe de Drosophile.
Droite : Histoblastes (petites cellules) et cellules larvaires marquées par E-cadhérine-GFP dans l’abdomen de la pupe de Drosophile.
Institut Pasteur/Mort cellulaire et homéostasie des épithéliums 61303
Mort cellulaire et homéostasie des épithéliums chez la drosophile -
Centrosomes (vert, sas-GFP) et contour des cellules épithéliales (rouge, E-cad-Tomato) du thorax de la pupe de drosophile.
Institut Pasteur/Alexis Villars 61302
Centrosome et contours cellulaires du thorax de la pupe de drosophile -
Cellules larvaires abdominales de la pupe de drosophile (E-cadhérine-GFP, vert) exprimant un marqueur des caspases (rouge).
Institut Pasteur/Romain Levayer 61301
Mort cellulaire dans l’abdomen de la pupe de drosophile -
Disque d’aile arc-en-ciel (profondeur du tissu en code couleur) montrant des clones en invagination (après activation de la MyosinII) chez la drosophile.
Institut Pasteur/Romain Levayer 61300
Tectonique du disque de l’aile chez la drosophile -
Clones jumeaux (verts et rouges) induits dans le disque imaginale d’aile de la drosophile. Gris : E-cad (contours cellulaires), bleu : DSRF (territoires entre les futures veines).
Institut Pasteur/Alexis Matamoro Vidal 61299
Clones jumeaux dans le disque d’aile chez la drosophile -
Marqueur du moteur moléculaire Myosine II dans l’épithélium du thorax de la pupe de drosophile.
Institut Pasteur/Alexis Villars 61298
Cables de Myosine dans la pupe de drosophile -
Epithelium du thorax de la pupe de Drosophile. Blanc : contours cellulaires /E-cad), pseudocouleurs: senseur de Dpp.
Institut Pasteur/Romain Levayer 61297
Ligne médiane et signalisation -
Epithelium du thorax de la pupe de Drosophile, rouge : E-cad, bleu : noyaux, Violet : senseur de la voie ERK.
Institut Pasteur/Romain Levayer 61296
Notum, noyaux et ERK -
Déformation et élimination des cellules normales par les cellules tumorales en croissance rapide (violet) dans l’épithélium de Drosophile (contours cellulaires en vert).
Institut Pasteur/Léo Valon 61295
Cellules pré-tumorales écrasant leurs voisines -
Epithélium du notum de la pupe de Drosophile, rouge : E-cad, vert : noyaux, violet : senseur de la voie ERK.
Institut Pasteur/Mort cellulaire et homéostasie des épithéliums 61294
Epithélium du thorax de la pupe de Drosophile -
Oeil de drosophile vu en microscopie électronique à balayage.
Image colorisée.
Institut Pasteur/Carla Saleh et Christine Schmitt. Colorisation Jean-Marc Panaud 59828
Oeil de drosophile vu en microscopie électronique à balayage -
Oeil de drosophile vu en microscopie électronique à balayage.
Image colorisée.
Institut Pasteur/Carla Saleh et Christine Schmitt. Colorisation Jean-Marc Panaud 59827
Oeil de drosophile vu en microscopie électronique à balayage -
Mouche du vinaigre en train de se nourrir d'un mélange de sucrose et de colorant alimentaire (bleu).
Le ventre bleu indique que la mouche a ingéré la mixture. En ajoutant du virus à celle-ci, cette méthode est utilisée pour infecter les mouches par voie orale afin d'étudier la réponse antivirale de la mouche.
Institut Pasteur - photo François Gardy 60323
Mouche du vinaigre en train de se nourrir -
Mouche du vinaigre en train de se nourrir d'un mélange de sucrose et de colorant alimentaire (bleu).
Le ventre bleu indique que la mouche a ingéré la mixture. En ajoutant du virus à celle-ci, cette méthode est utilisée pour infecter les mouches par voie orale afin d'étudier la réponse antivirale de la mouche.
Institut Pasteur - photo François Gardy 60324
Mouche du vinaigre en train de se nourrir -
Mouche du vinaigre en train de se nourrir d'un mélange de sucrose et de colorant alimentaire (bleu).
Le ventre bleu indique que la mouche a ingéré la mixture. En ajoutant du virus à celle-ci, cette méthode est utilisée pour infecter les mouches par voie orale afin d'étudier la réponse antivirale de la mouche.
Institut Pasteur - photo François Gardy 60321
Mouche du vinaigre en train de se nourrir -
Mouche du vinaigre, Drosophila melanogaster. Modèle animal utilisé
par le laboratoire "Virus et interférence ARN" pour comprendre la relation virus-insecte.
Institut Pasteur - photo François Gardy 60322
Mouche du vinaigre, Drosophila melanogaster. -
Drosophila melanogaster, mouche du vinaigre.
Modèle animal utilisé par le laboratoire "Virus et interférence ARN" pour comprendre la relation virus-insecte.
Institut Pasteur - photo François Gardy 58651
Drosophila melanogaster, mouche du vinaigre -
Divisions mitotiques synchrones chez un embryon de drosophile. (DAPI: bleu; H3PS10: vert).
© Institut Pasteur/Delphine Fagegaltier, Génétique et Epigénénétique de la Drosophile en collaboration avec la Plate-forme d'Imagerie Dynamique 40031
Divisions mitotiques synchrones chez un embryon de drosophile -
Reconstruction 3D partielle de chambres ovariennes chez la Drosophile.
Dès les premiers stades du développement, les cellules folliculaires (dont les petits noyaux sont marqués en violet) entourent la chambre ovarienne contenant les cellules nourricières (gros noyaux marqués en rouge) et l'ovocyte (petit noyau marqué en rouge). Aux cours du développement, ces cellules vont exprimer un marqueur de différentiation (en vert) essentiel à la maturation de l'ovocyte.
Technique/microscopie : microscope confocal ZEISS LSM710
Institut Pasteur/Franck Coumailleau, unité de Génétique du Développement de la Drosophile. Acquisition à la Plate-Forme d'Imagerie Dynamique. 38353
Reconstruction 3D partielle de chambres ovariennes chez la Drosophile