Votre recherche :

45 résultat(s) en 3 ms

  • Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) ancrées dans les cellules épithéliales de l'intestin.
    Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) ancrées dans les cellules épithéliales de l'intestin.
    Les bactéries filamenteuses segmentées (SFB) sont des bactéries de la famille des Clostridiales qui colonisent l'intestin de nombreuses espèces et probablement aussi celui de l'Homme, sans provoquer de maladies : elles vivent en symbiose avec les cellules épithéliales et sont nécessaires à la maturation de la barrière immune intestinale.
    Institut Pasteur et Institut Imagine 50136
    Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) ancrées dans les cellules épithéliales de l'intestin.

     

  • Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) en microscopie électronique à balayage.
    Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) en microscopie électronique à balayage.
    Les bactéries filamenteuses segmentées (SFB) sont des bactéries de la famille des Clostridiales qui colonisent l'intestin de nombreuses espèces et probablement aussi celui de l'Homme, sans provoquer de maladies : elles vivent en symbiose avec les cellules épithéliales et sont nécessaires à la maturation de la barrière immune intestinale.
    Institut Pasteur et Institut Imagine 50133
    Bactéries filamenteuses segmentées (SFB) en microscopie électronique à balayage.

     

  • Tissu infecté par Listeria monocytogenes (la bactérie apparaît en rouge)
    Tissu infecté par Listeria monocytogenes (la bactérie apparaît en rouge).
    Institut Pasteur/Yu-Huan Tsai et Marc Lecuit 49765
    Tissu infecté par Listeria monocytogenes (la bactérie apparaît en rouge)

     

  • Immunofluorescence et analyse par segmentation de cellules HeLa infectées par la bactérie Listeria monocytogenes.
    Immunofluorescence et analyse par segmentation de cellules HeLa infectées par la bactérie Listeria monocytogenes.
    Les cellules ont été marquées avec DAPI pour marquer l'ADN (bleu), avec de la phalloïdine pour marquer l'actine (rouge) et avec des anticorps anti-C internaline pour identifier les cellules infectées (en jaune). Noyaux et cytoplasmes ont été segmentés en utilisant le logiciel d'analyse Cellprofiler.
    Institut Pasteur/Andreas Kühbacher, Edith Gouin, Jason Mercer, Mario Emmenlauer, Christophe Dehio, Pascale Cossart et Javier Pizarro-Cerda. 49031
    Immunofluorescence et analyse par segmentation de cellules HeLa infectées par la bactérie Listeria monocytogenes.

     

  • Dans le colon de souris, un amas de cellules de type 3 (en vert).
    Dans le colon de souris, un amas de cellules de type 3 (en vert). Ces cellules sont induites par le microbiote et bloquent les réactions allergiques (de type 2).
    Communiqué de presse : : www.pasteur.fr/fr/institut-pasteur/presse/documents-presse/comment-le-microbiote-bloque-les-allergies/

    © Institut Pasteur/Gérard Eberl 48945
    Dans le colon de souris, un amas de cellules de type 3 (en vert).

     

  • <i>Sans titre</i>
    Patrick Tosani, Sans titre, 2015, Production Organoïde / Institut Pasteur, Courtesy de l'artiste

    Organoïde : une banque de données d'images réalisées par des artistes pour accompagner les recherches scientifiques de l'Institut Pasteur.
    Organoïde est un projet initié par l'Institut Pasteur et l'artiste Fabrice Hyber avec le soutien de la Fondation Daniel et Nina Carasso
    Site : www.organoide-pasteur.fr/


    48913
    Sans titre

     

  • Cellules humaines en cours de division
    Cellules humaines (HeLa) en cours de division au moment de la cytocinèse (lorsque les cellules se coupent physiquement en deux cellules filles). Microscopie électronique à balayage.
    © Institut Pasteur - CNRS/Arnaud Echard et Stéphane Frémont 53716
    Cellules humaines en cours de division

     

  • Régulation de la voie de signalisation Notch par la protéine kinase AKK1
    La voie de signalisation Notch contrôle de nombreux processus cellulaires via l'activité du récepteur transmembranaire Notch. La kinase AAK1 (Adaptor-Associated Kinase 1) agit comme un régulateur positif de cette voie.
    Cellule du haut: cellule HeLa exprimant AAK1 présentant une localisation de Notch (en rouge) dans des vésicules Rab5Q79L (en vert).
    Cellule du bas: la déplétion d'AAK1 conduit à des vésicules agrandies de Rab5Q79L (en vert) avec l'absence de Notch dans celles-ci.
    © Institut Pasteur/Gupta-Rossi Neetu, Meas-Yedid Vannary and Hua Wong 47737
    Régulation de la voie de signalisation Notch par la protéine kinase AKK1

     

  • Cellule en apoptose
    Cellule en apoptose, présentant corps et bourgeons apoptotiques, typiques de ce type de mort cellulaire. Microscopie confocale à fluorescence.
    Comprendre comment les différents types de mort cellulaire influencent l'immunité est un sujet de recherche majeur pour le développement de thérapies s'appuyant sur une activation du système immunitaire.
    © Institut Pasteur/Nader Yatim 47725
    Cellule en apoptose

     

  • Cytosquelette d'un gliome en migration.
    Cytosquelette d'un gliome en migration. Image SIM-3D du cytosquelette d'un gliome en migration. Les microtubules sont marqués en jaune, la vimentine en rouge et l'actine en cyan.
    Institut Pasteur/Cécile Leduc et Sandrine Etienne-Manneville 47040
    Cytosquelette d'un gliome en migration.

     

  • Modifications epigénétique de macrophages humains par Legionella pneumophila
    Modifications epigénétique de macrophages humains par Legionella pneumophila.
    Des cellules de la lignée monocytaire THP-1 differenciés en macrophages on été infectées par Legionella pneumophila (en rouge). Le cytosquelette d'actine est marqué en vert et les noyaux des cellules en bleu. La modification epigénétique mise en place par la bactérie est en magenta.
    Technique microscopie : Microscopie confocale (platforme PFID)
    © Institut Pasteur/Monica Rolando, Biologie des bactéries intracellulaires 46828
    Modifications epigénétique de macrophages humains par Legionella pneumophila

     

  • Réplication intracellulaire de Legionella pneumophila (en rouge) dans des cellules epithéliales de poumon
    Réplication intracellulaire de Legionella pneumophila (en rouge) dans des cellules epithéliales de poumon (lignée cellulaire A549). Le cytosquelette d'actine est marqué en vert et les noyaux en magenta.

    Technique microscopie : Microscopie confocale (plateforme PFID)
    Institut Pasteur/Monica Rolando 46827
    Réplication intracellulaire de Legionella pneumophila (en rouge) dans des cellules epithéliales de poumon

     

  • Legionella pneumophila strain Paris replicating within human macrophages.
    Replicating vacuole of Legionella pneumophila strain Paris (red) at 20h post-infection. The actin cytoskeleton (white) and the nucleus (blue) of host cells are also shown. Spinning disc confocal microscopy (40X).
    © Institut Pasteur/Pedro Escoll, unité Biologie des Bactéries intracellulaires 46802
    Legionella pneumophila strain Paris replicating within human macrophages.

     

  • Legionella pneumophila strain Paris replicating within human macrophages.
    Replicating vacuole of Legionella pneumophila strain Paris (red) at 20h post-infection. The actin cytoskeleton (white) and the nucleus (blue) of host cells are also shown. Spinning disc confocal microscopy (40X).
    © Institut Pasteur/Pedro Escoll, unité Biologie des Bactéries intracellulaires 46798
    Legionella pneumophila strain Paris replicating within human macrophages.

     

  • Astrocytes en migration
    Dans des astrocytes en migration, les microtubules (en vert) et deux composants des filaments intermédiaires : GFAP (en rouge) et Nestin (en bleu). Imagerie en immunofluorescence.
    Institut Pasteur/unité Polarité cellulaire, migration et cancer 42384
    Astrocytes en migration

     

  • Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa, deux microorganismes du microbiote pulmonaire, observée en microscopie électronique à balayage
    Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa, deux microorganismes du microbiote pulmonaire, observée en microscopie électronique à balayage. La bactérie se fixe le long du mycélium et sur la matrice extracellulaire formée par le champignon. Cette interaction résulte en la formation d'un biofilm mixte composé de matrice extracellulaire englobant le champignon et la bactérie.
    Institut Pasteur/Benoît Briard - unité des Aspergillus, Perrine Bomme - Plate-Forme de Microscopie ultrastructurale, colorisation Jean-Marc Panaud 42120
    Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa, deux microorganismes du microbiote pulmonaire, observée en microscopie électronique à balayage

     

  • Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa observée en microscopie électronique à balayage.
    Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa observée en microscopie électronique à balayage. La bactérie se fixe le long du mycélium et émet des filaments augmentant son adhésion. Cette étude montre que ces deux microorganismes du microbiote pulmonaire sont capables de former une communauté mixte bactérie-champignon.
    Institut Pasteur/Benoît Briard et Anne Beauvais - unité des Aspergillus, Perrine Bomme - Plate-Forme de Microscopie ultrastructurale, colorisation Jean-Marc Panaud 42054
    Interaction Aspergillus fumigatus et Pseudomonas aeruginosa observée en microscopie électronique à balayage.

     

  • Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis
    Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis en microscopie électronique. On observe la forme infectieuse, de petite taille (appelée Corps élementaire ou Elementary Body), et la forme replicative, plus grande (Corps réticulé ou Reticulate Body).
    © Institut Pasteur/Marie-Christine Prévost et Agathe Subtil 40918
    Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis

     

  • Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis.
    Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis en microscopie électronique.
    Les bactéries Chlamydia se développent exclusivement à l'intérieur d'une cellule-hôte.
    © Institut Pasteur/Marie-Christine Prévost et Agathe Subtil 40917
    Cellule épitheliale infectée par Chlamydia trachomatis.

     

  • Cytosquelette de vimentine d'un gliome (lignée U373) cultivé in vitro et observé par microscopie de super-résolution STORM
    Cytosquelette de vimentine d'un gliome (lignée U373) cultivé in vitro et observé par microscopie de super-résolution STORM (taille : 12x17 µm²).
    Le réseau de filaments intermédiaires, dont fait partie la vimentine, joue potentiellement un rôle important dans le caractère invasif des cancers du cerveau (gliomes). Les images de super-resolution permettent de mieux comprendre l'architecture interne du réseau et comment il se superpose aux autres types de cytosquelette.
    Institut Pasteur/Cécile Leduc, unité Polarité Cellulaire Migration et Cancer. Acquisition à la Plate-Forme d'Imagerie Dynamique. 40904
    Cytosquelette de vimentine d'un gliome (lignée U373) cultivé in vitro et observé par microscopie de super-résolution STORM